大環(huán)內(nèi)酯類和林可胺類藥物殘留測(cè)定方法——微生物法和氣相色譜法
大環(huán)內(nèi)酯類和林可胺類藥物殘留測(cè)定方法——微生物法和氣相色譜法
[db:作者] / 2022-12-12 00:006.1.4.2 測(cè)定方法
MALs種類較多,結(jié)構(gòu)相似,對(duì)于該類藥物的安全使用和殘留檢測(cè)一直是各國(guó)關(guān)注的焦點(diǎn)和研究的重點(diǎn)。而林可胺類藥物常常與MALs同時(shí)使用,因此需要進(jìn)行多殘留同時(shí)分析。目前,國(guó)內(nèi)外關(guān)于MALs和林可胺類藥物殘留分析的文獻(xiàn)較多,其檢測(cè)方法主要包括微生物法、免疫分析法(IA)、薄層色譜法(TLC)、毛細(xì)管電泳法(CE)、氣相色譜法(GC)、高效液相色譜法(HPLC)、氣質(zhì)聯(lián)用法(GC-MS)和液質(zhì)聯(lián)用法(LC-MS)等。總體說(shuō)來(lái),大多儀器分析技術(shù)基本都可用于兩類藥物的殘留檢測(cè),以HPLC和LC-MS最為常見(jiàn)。隨著殘留分析技術(shù)的發(fā)展,CE和TLC由于靈敏度達(dá)不到要求而逐漸被色質(zhì)聯(lián)用法所代替。
(1)微生物法(microbiologicalanalysis)
微生物法是經(jīng)典的MALs含量測(cè)定方法。王敏等利用微生物生長(zhǎng)抑制的原理,對(duì)6種MALs殘留進(jìn)行了定性檢測(cè)。該方法通過(guò)MALs敏感菌Bacillusstearothermophilus細(xì)菌的生長(zhǎng)與否,來(lái)判斷MALs的存在。該方法對(duì)多種基質(zhì)的動(dòng)物源食品檢測(cè)限低,能夠達(dá)到食品中MALs的MRL的1/2,操作簡(jiǎn)單且不需要復(fù)雜的儀器設(shè)備,可作為有效的篩選方法。Nouws等建立了微生物法測(cè)定牛奶中MALs等多種類藥物的殘留量。該方法以枯草桿菌、藤黃微球菌、大腸桿菌、表皮葡萄球菌等作為試驗(yàn)用菌株,通過(guò)平板上抑制區(qū)域的大小來(lái)判斷藥物殘留量的多少,除了少數(shù)幾種藥物,大多數(shù)待測(cè)抗生素的靈敏度都能滿足歐盟所規(guī)定的牛奶中抗生素MRLs的要求,待測(cè)的48種抗生素均未超過(guò)歐盟所規(guī)定的MPLs。在規(guī)定MRLs水平上,7種培養(yǎng)板的平均CV為4.5%~9.8%。黃曉蓉等利用微生物抑制法檢測(cè)了肉類、水產(chǎn)品及蛋中的MALs殘留量,方法的LOD值為0.05mg/kg。采用藤黃微球菌ATCC9341、枯草芽胞桿菌ATCC663、蠟樣芽孢桿菌蕈狀變種ATCCI1778為敏感菌,一次操作可同時(shí)檢測(cè)肉類、水產(chǎn)品及蛋中的四大類抗生素殘留。微生物法作為篩選方法具有簡(jiǎn)便、快速、易操作等優(yōu)點(diǎn),但由于固有的局限性,結(jié)果可比性差,方法靈敏度不佳,達(dá)不到準(zhǔn)確定性定量分析的目的,逐漸被儀器分析方法所取代。
(2)薄層色譜法(thinlayerchromatography,TLC)
TLC法用薄層板將樣品提取液中被測(cè)物展開分離后,測(cè)定樣品與標(biāo)準(zhǔn)樣品吸收光變化或采用發(fā)射光薄層掃描法來(lái)測(cè)定被測(cè)物含量。Ramirez等引采用了高效薄層色譜(HPTLC)-生物自顯影方法進(jìn)行牛奶中紅霉素等藥物的多殘留檢測(cè)。該方法采用枯草桿菌作為檢測(cè)目標(biāo)微生物,殘留的抗生素用乙腈進(jìn)行提取,石油醚進(jìn)行除脂后,用二氯甲烷進(jìn)行分離。該方法完全滿足牛奶中殘留限量的要求,平均回收率達(dá)90%~100%,CV為7.2%~21.3%。這種高效薄層色譜分析大大地縮短了分析時(shí)間,并有效地改善了紅霉素等藥物的敏感性。韓南銀等建立TLC法來(lái)檢查蜂蜜中殘留的紅霉素。以固相萃取對(duì)紅霉素進(jìn)行了提取,極性的硅膠作固定相,乙酸乙酯~乙醇-15%醋酸銨混合液(86+38+76,v/v)為展開劑,濃硫酸-香草醛-95%乙醇混合(4+0.33+36,v/v)作為顯色劑,其LOD可達(dá)5mg/kg。
(3)毛細(xì)管電泳法(capillaryelectrophoresis,CE)
作為分離技術(shù)中的一種,CE有較高的分離效率,可同時(shí)分析多種待測(cè)成分,且所需時(shí)間較少,并能準(zhǔn)確定量。但是,也存在一些缺點(diǎn),比如對(duì)于上樣量較少的樣品來(lái)說(shuō),往往靈敏度不夠。此種方法用于MALs和林可胺類藥物殘留分析的報(bào)道較少。李向麗等基于泰樂(lè)菌素能增強(qiáng)聯(lián)吡啶釕[Ru(bpy)32+]電化學(xué)發(fā)光信號(hào)的現(xiàn)象,結(jié)合CE分離技術(shù),建立了動(dòng)物組織和蜂蜜中泰樂(lè)菌素測(cè)定的新方法。實(shí)驗(yàn)分別對(duì)檢測(cè)和分離條件進(jìn)行了優(yōu)化,在優(yōu)化條件下,泰樂(lè)菌素在濃度0.05~10.00μg/mL范圍內(nèi)具有良好的線性關(guān)系,LOD為0.02ug/mL,用于實(shí)際樣品中泰樂(lè)菌素的測(cè)定,回收率為80.0%~95.0%。
(4)氣相色譜法(gaschromatography,GC)
MALs和林可胺類藥物的分子量均較大,而且結(jié)構(gòu)中含有較多的極性基團(tuán),直接采用GC分析是不行的,必須經(jīng)過(guò)衍生化后才可以進(jìn)行GC分析。
Luo等建立了鮭魚組織中林可霉素的GC檢測(cè)方法。采取磷酸緩沖液提取鮭魚組織中的林可霉素,經(jīng)C18固相萃取凈化后,用N,O-雙(三甲基硅烷基)三氟乙酰胺作衍生化試劑進(jìn)行衍生,形成一個(gè)三甲基硅烷基,再進(jìn)行GC分析,氮磷檢測(cè)器(nitrogen-phosphorusdetector,NPD)檢測(cè)。該方法在25~250ng/g濃度范圍內(nèi)線性較好,相關(guān)系數(shù)r為0.994;在50ng/g、100ng/g、200ng/g三個(gè)添加濃度水平上,平均回收率均大于80%,RSD均小于6%;LOD為1.7ppb,LOQ為3.8ppb。陶燕飛等建立了動(dòng)物可食性組織中林可霉素和大觀霉素殘留量的GC測(cè)定方法。提取物中加入500μL硅烷化試劑(BSTFA)和100μL乙腈,渦旋混合1min,密封,75℃恒溫箱中衍生化反應(yīng)1h后,GC分離后NPD測(cè)定。該衍生化產(chǎn)物較為穩(wěn)定,密封情況下至少一周不會(huì)降解,但應(yīng)避免置于潮濕環(huán)境中。林可霉素的LOQ為30μg/kg,在30~3000ug/kg添加水平,回收率為73.2%~85.7%。該作者還應(yīng)用GC-NPD和氣相色譜-質(zhì)譜(GC-MS)建立了一種定性、定量測(cè)定動(dòng)物性食品中林可霉素和大觀霉素殘留的多維分析方法。該方法采用磷酸鹽緩沖進(jìn)行液加速溶劑萃取(ASE),三氣乙酸脫蛋白,加入十二烷磺酸鈉作為離子對(duì)試劑進(jìn)行C18固相萃取凈化,洗脫液吹干后用BSTFA衍生化,進(jìn)行GC-NPD分析和GC-MS確認(rèn)。這兩種藥物在GC-NPD方法中的LOQ分別為16.4μg/kg和21.4μg/kg,在GC-MS方法中的LOQ分別為4.1μg/kg和5.6μg/kg;添加水平為20~200μg/kg時(shí),GC-NPD方法的回收率為73%~99%,RSD小于17%;添加水平為5~20μg/kg時(shí),GC-MS方法的回收率為70%~93%,RSD小于21%。Takasuki等建立了組織中ERM、OLE、SPI、KIT、TYL的氣相色譜-質(zhì)譜(GC-MS)分析方法。肉樣經(jīng)甲醇提取、LLP后,再使用硅膠固相萃取柱凈化以除去干擾物質(zhì)。提取物在鉑的催化下加氫,打開碳碳雙鍵結(jié)構(gòu),并在0.3mol/L鹽酸中水解脫去中性糖鏈,水解產(chǎn)物在醋酸酐-吡啶中?;纱姿狨?。衍生化的目的在于降低待測(cè)物的分子量和極性,而使用醋酸酐?;^硅烷化得到的衍生物分子量更小,可提高質(zhì)譜檢測(cè)的靈敏度。
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